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货号 | 规格 | 销售价 |
---|---|---|
MF030-01 | 50T | 198.00 |
MF030-04 | 200T | 768.00 |
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说明书:
MF030-M5+PCR+&+DNA+Fragment+Purification+Kit.pdf
M5 PCR & DNA Fragment Purification
Kit使用说明书
产品名称 单位 货号
M5 PCR & DNA Fragment Purification Kit 50T MF030-01
M5 PCR & DNA Fragment Purification Kit 200T MF030-04
【储存条件】
常温运输,室温(15~30˚C)保存,保质期一年。如需长期保存,可将各试剂组分置于 2~8˚C,使用时如发现结晶,可于 37~55˚C水浴加热助溶。离心吸附柱不建议低温或大于 30˚C保存,否则可能影响吸附效率。
【产品简介】
M5快速 DNA 胶回收试剂盒利用利用硅基质材料在高盐缓冲系统对 DNA 高效、专一吸附的原理,配备聚合美自主研发的膜结合液(又称溶胶液)和高性能的硅胶膜离心吸附柱,用于纯化 PCR 反应产物或其他酶促反应体系中的蛋白质、残留 dNTP、引物、盐分等其他杂质,对引物二聚体的清除率在 70%以上。本试剂盒配套的膜结合液和离心吸附柱的最大吸附量为 20 μg,对 100 bp~10 kb 线性 DNA 片段的回收效率可高达 95%,也可应用于 20 kb 以下环形质粒的脱盐纯化。整个操作可在 10 分钟内完成,快速、简便。回收后的 DNA 可以直接用于酶切、连接、测序、标记、杂交和体外转录等多种分子生物学实验。
【回收效率】
线性 DNA 片段大小 回收效率
50 bp 30~50%
100 bp ~ 200 bp 50~70%
200 bp ~ 5 kb 70~90%
5 kb ~ 10 kb 50~70%
【产品组份】
50T 200T 注意事项
膜结合液(MB) 25ml 100ml
膜漂洗液(MW) 15ml 60ml 初次使用前请按瓶标说明加入无水乙醇混匀
洗脱缓冲液(EB) 10ml 30ml
离心吸附柱及收集管 50套 200套 室温密闭干燥保存
【实验准备】
用户需自行准备的材料:无水乙醇,异丙醇,台式离心机。
初次使用本试剂盒,请按瓶标说明向膜漂洗液(MW)中加入相应体积的无水乙醇(用户自备),并在试剂瓶上做标记。
【操作步骤】
DNA 结合:按每 1 μl DNA 样品加入 1 μl 膜结合液(MB)的比例(1:1)加入膜结合液,混匀后转移到插入收集管的离心吸附柱内,室温静置 1 分钟,室温下≥12,000 x g 离心 1 分钟,弃除收集管中的废液,将离心吸附柱重新插回收集管中。
离心吸附柱的最大吸附量为 20 μg,每次最多可离心 950 μl 溶液,如溶液体积大于 950 μl,可分批转移到同一吸附柱内,分次离心;若样品体积低于 50 μl,可用灭菌蒸馏水或洗脱缓冲液(EB)补足至 50 μl,再加入 50 μl 的膜结合液(MB)。为增加小片段的回收效率,当回收的 DNA片段小于 300 bp 时,或大于3000bp时,可加入 1:1 体积的异丙醇。
2.清洗:加入 700 μl 膜漂洗液(MW,请确认已加入无水乙醇)于离心吸附柱中,室温下≥12, 000 x g 离心 30 秒,弃除收集管中的废液,将离心吸附柱重新插回收集管中。
3.再次清洗:加入 500 μl 膜漂洗液(MW)于离心吸附柱中,重复离心一次。弃除废液后,将离心吸附柱去盖再次离心 1 分钟,彻底去除残余漂洗液。
4.洗脱:小心取出离心吸附柱,将其套入一个新的 1.5 ml 灭菌离心管中。向硅胶吸附膜的中央加入 30 μl 洗脱缓冲液(EB),室温静置 1 分钟后,≥12,000 x g 离心 1 分钟收集纯化的 DNA 片段。
为提高回收片段浓度,离心收集后可将洗脱后的溶液再次加入离心吸附柱中重复洗脱一次,可提高约 20%的产量;如必须使用无菌去离子水洗脱,需注意其 pH 值是否接近中性,否则应使用 NaOH 溶液将 pH 值调节至 7.0~8.5 之间。
5.储存:弃除离心吸附柱,获得的 DNA 片段可直接用于后续反应或于-20℃长期保存。
【常见问题及解决方案】
问题
可能原因
解决方案
回收效率低
膜结合液(MB)使用量不当
按1 µl DNA 溶液加入 1 µl 膜结合液的比例(1:1)加入膜结合液
离心力不足, DNA 未与硅胶膜充分结合
≥12,000 rpm 离心,如果离心机达不到该转速,可适当延长离心时间以确保胶溶液完全通过硅胶膜
膜漂洗液(MW)未添加乙醇
第一次使用时按比例添加乙醇,并在试剂瓶上做标记
洗脱溶液 pH 值不合适
使用试剂盒提供的洗脱缓冲液(EB);如用去离子水洗脱,需将 pH 值调至 7.0~8.5 范围
洗脱溶液体积过小
使用 30 µl 以上洗脱溶液,加至硅胶膜的中央,静置 1 分钟,使膜完全浸润后再离心
回收产物测序结果不佳
用量太低
提高测序反应使用的DNA量;如果回收产物浓度过低,可通过乙醇沉淀浓缩产物
用量过高,干扰测序结果
降低 DNA 用量,必要时用 EB 或灭菌双蒸水进行稀释
TE 缓冲液干扰测序结果
使用无 DNA 酶污染的洗脱缓冲液(EB)或灭菌双蒸水溶解 DNA 作为测序模板
酶切效果不佳
酶的质量低劣或使用方法不当
按照厂家说明书正确使用酶;设立阳性对照检测内切酶活性
膜漂洗液(MW)去除不彻底,胶回收产物中残留有乙醇或盐
再次乙醇沉淀回收,并确保 DNA 溶液体积不高于酶切反应总体积的 10%
电泳上样时漂出上样孔
未添加上样缓冲液
与适量上样缓冲液混合后上样
膜漂洗液(MW)去除不彻底,胶回收产物中残留有乙醇
确保洗涤步骤中洗涤缓冲液去除彻底,可增加离心时间或开盖放置一段时间使残留乙醇挥发
回收产物电泳条带不锐利
DNA 分子断裂
混合等操作尽量小心,特别是大片段,应避免 DNA 因机械损伤而断裂
其他 DNA 分子污染
控制PCR反应条件,防止非特异性扩增
DNA 分子降解
PCR产物不能及时回收,应于 4℃保存,避免 DNA 降解
克隆效率低
离心吸附柱漂洗不彻底
再次乙醇沉淀回收
回收过程中有外切酶污染,导致DNA片段末端序列缺失
回收过程保证无菌操作
感受态细胞的效率差
确保感受态制备和保存方法正确
【备注】本产品仅供科研使用。在确认产品质量出现问题时,本公司承诺为客户免费更换等量的质量合格产品。